兔耳瘢痕模型的应用现状

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2024年7月18日发(作者：)

１　１７４　＿｝ｌ阁美容医学２０１　１年７月第２０卷第７期Ｃｈｉｎｅｓｅ　Ｊｏｕｒｎａｌ　０ｆ　Ａｅｓｔｈｅｔｉｃ　Ｍｅｄｉ（．ｉＩ　Ｊｕ１．２０１　１．Ｖｏ１

２０．Ｎ（１＿７　

．

・

综述・　

兔耳瘢痕模型的应用现状　

Ｔｈｅ　ｅｘｉｓｔｉｎｇ　ｓｉｔｕａｔｉｏｎ　ｏｆ　ａｐｐｌｉａｎｃｅ　ｏｆ　ｒａｂｂｉｔ　ｅａｒ　ｓｃａｒ　ｍｏｄｅｌ　

李荟元　

【第四军医大学西京医院全军整形外科研究所

传统观念认定病理性瘢痕是人类特有的一种病理现象，　

陕西西安７１　００　３２）　

药物在瘢痕防治巾的效果发作用机制；⑦基　治疗　瘢　防　

治中的应用等　。新近（２０１１）ｌ　我科义报道ｒ大　内船类　

不会在动物身上出现。国内外众多学者为寻求瘢痕动物模型　

曾作过人龟的实验探索。然而，至１９９７年以前，还没有出现　

由动物自身产牛的病理瘢痕实验模型。这已成为创伤研究深　

入发展的重人障碍。　

瘢痕裸鼠移植模型（简称裸鼠模型），是将人类病理性瘢　

痕组织移植到裸鼠身＿卜，借助裸鼠没有细胞免疫反应的环境　

来研究处于寄生状态下瘢痕的某些改变。裸鼠模型在创伤研　

究中曾发挥过不可忽视的作用。然而，它无法观察瘢痕自身　

的发牛、发展以及其转归的自然全过程；而且，这种缺乏免疫　

反应的动物模型离临床实际也相距甚远。冈此，希望发现由　

动物自身产　的病理瘢痕模型，成为国内外学者们关注的热　

门课题。　

１９９７年，ＭｏｒｒｉＳ　发现在兔耳创面上可以产生与人类病　

理瘢痕类似的真皮过度增生现象。１９９８年，第四　医人学西京　

医院李荟厄等　经过大量兔耳创面的实验观察，并从多个侧　

面研究了兔耳创面增牛组织的特性，证实兔耳可以产生与人　

类增生性瘢痕相似的病理改变，并认定可以作为瘢痕研究的　

动物模型。ＭｏｒｒｉＳ的发现，李荟元等在国内首次报道的兔耳瘢　

痕动物模型的研究资料，突破了动物不能出现病理性瘢痕的　

传统观念，为创伤研究提供了一种有效的动物实验模型，囚　

此，引起ｒ闱内外同道的密切关注。众多学者引用了市Ｉ１天资　

料，进行了进‘步的实验，并以此模型开展了创伤修复、特别　

是搬痕　面的诸多实验。本文综述了２０１１年４月以前，目内　

外学者Ｌｊ兔耳瘢痕模型卡Ｈ关的研究资料及成果，供读者参阅。　

１　应用免耳瘢痕模型深入探索病理性瘢痕发生的机制　

病理性瘢痕干扰着众多的人群。目前，对病理性瘢痕的　

防治还缺乏非常理想的措施，重要的原因之　是对其发生机　

制还不　分清楚，而缺乏良好的动物模型则是深入揭示瘢痕　

奥秘的重要障碍。因此，建立由动物产生的瘢痕实验模型，探　

讨病　性瘢痕发生的机制，成为国内外学者其同关注的课　

题。第四　医人学西京医院全军整形外科研究所在建立兔耳　

搬痕模　的系列研究巾，除了从多方面进行了证实与人类病　

理性瘢痕的　似性研究外，还进行了瘢痕发生机制的相关研　

究：　存［ＦＮ　Ｙ和ＴＧＦ一１３　干预卜，瘢痕组织中成纤维细胞　

凋　的动态改变；②血管增生与增牛性瘢痕发牛的关系，以　

及血管形成抑制剂对瘢痕的抑制效应；③肌成纤维细胞与创　

晰收缩及瘢痕挛缩的关系；④内源性ＴＧＦ　Ｄ　与瘢痕增生的　

关系；⑤信号转导系统在瘢痕发生中的改变及影响；⑥多种　

免疫抑制剂一他克萸司（Ｔａｃｒｏｌｉｍｕｓ，ＦＫ５０６）』ｆｊ　兔耳刨　

后，通过抑制ＴＧＦ　Ｂ　Ｉ、ＴＧＦ—　２　Ｉ　ｃｏｌｌａｇｅｎ—ａ　的表　，他创　

嘶的成纤维细胞数最减少，减少悛　的合成，发挥抑制瘢　

增牛的效应。　

与此同时，困内外学者也发表了应用兔耳搬痕模掣逊　

相关研究的资料，柳大烈等（２０００）［１８，刘凯等（２００２／　利川　

兔耳模犁，存兔耳腹侧面的创血卜外ｊ｝Ｊ　ｌＦＮ—ｖ，发现　兔Ｊｊ＿刨　

向及周围增生组织中，蛋白酪氨睃酶（　ｒＫ）活性叫　岛Ｔ　　Ｊ

皮肤组织，肉芽中增高的｝）ＴＫ持续时　更Ｋ。捉　：作为　Ｉｊ　

转导系统巾的蛋白酪氨酸激酶的活一Ｉｑ！／ｔ　赢　ｊ情理性瘢　的拨　

牛、发展有关。张选奋等（２００４）［１７１　明，　兔耳刨　川　

ＴＧＦ—ｐ　后，组织中的蛋白激酶Ｃ（ＰＫＣ）商表达，ｍ增　搬痕　

织中的表达义高丁非增生性瘢痕组纵，认为ＴＧＦ　ｆ３，通过　化　

ＰＫＣ可以刺激瘢痕的增殖。罗梅等（２００３）Ｉｍ　哿反义Ｔ（　汁　

入兔耳增生块内，发现反义ＴＧＦ—Ｂ　通过对抗ＴＧＦ　０　九勺ｆ１Ｉ川　

而显示对瘢痕的抑制效应。任　虹等（２００８）　将反义结缔　

织生长因子（ＣＴＧＦ　ＡＳＯＤＮ）注入兔耳创面后，通过抑制ｃ　ｒＧ｝　

蛋白的表达、抑制成纤维细胞增殖、加快成纤维　胞的捌ｒ．，　

可以抑制瘢痕的增生。李颖等（２００９）￣　也　兔　模　Ａ　

明，肿瘤坏死囚子（ＴＮＦ—ａ）可以抑制兔耳搬痕的　￣ｆ４Ｌ　ｔ　：张…等　

（２００１）＿２　。　在兔耳模型上查明：透口月质酸　促进胶原增　，　

瘢痕增牛过程中，Ｉ１Ａ持续增高　异常瘢痕发，｛　仃天。乍希　

等（２００１）　。将透明质酸（ＨＡ）外敖兔耳创ｌ卣，待Ｊ　肢化　，将　

ＨＡ　射于增　块内。结果：ＨＡ的两组ＩＩＰｒ含　均低ｊ　水　

组，认为透明质酸可抑制成纤维细胞股原的分泌。ＨＡ　能仳　

进ＩＩＩ型胶原的合成。　一作者（２００１）５２４　免　模　

实透明质酸有抑制瘢痕增牛的效应，当外用透明质酸临减少　

ＨＡ后可引起兔耳较人的瘢痕增　。刘鸣等（２００６）７２￣］Ｉ／ｔ：兔　模　

掣上证实：硫酸软骨素裂解酶通过水解硫酸软　ｈＦｉ　　禁，　除　

胶原周围的酸性粘多糖，促使胶原的降解，发挥抑制瘢痕增　

生的作用。邱林等（２００８）　将转染ＴＧＦ—ｆ３：Ｃ／２Ｓ２　ｆｌ｛Ｊ免　

ＢＭＳＣＳ转染至兔耳瘢痕模型上，认定仃抑制兔耳瘢痕增　的　

作用。国内学者（２０１１）㈦报道，ｓｋｉ足・种新的伤口愈合　爻　

因子。通过转基囚使兔耳创面ｓｋｉ表　增高，不仅通过消炎、　

促上皮化、增加肉芽生长而能明显加速伤　愈合：　ＩＪ．１ｆｉ　Ｊ‘　

抑制胶原合成而抑制瘢痕增生。ｓｋｉ足通过８ｍａ（ｔ２／３　１　Ｓｍａｄ　

通路而发挥作用的。Ｍａｒｃｕｓ等（２００２）利，Ｌ｝ｊ兔上４Ｊ搬痕模　｛：＝ｌＪ探　

高龄者的瘢痕增生程度为何要低¨氏龄者，结论足Ｈｉ　龄　

中国美容医学２０１１年７月第２Ｏ卷第７期Ｃｈｉｎｅｓｅ　Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ａｅｓｔｈｅｔｉｃ　Ｍｅｄｉｃｉｎｅ．Ｊｕ１．２０１１．Ｖｏ１．２０．Ｎｏ．７　１１７５　

者的成纤维细胞分泌胶原的功能减弱的结果。ＳａｕｌｉＳ等　

（２００２）ｌ鹄　利用兔耳模型检测Ｍｅｄｅｒｍａ的抗瘢痕增生效应，证　

者（２０１　１）ｃ蛔将不同浓度的鱼肝油醇酸（０Ａ）用于兔耳创面。结果：　

创面增生组织中的ＴＧＦ—Ｄ　，Ｉ、ＩＩＩ型胶原，明显减少；ＭＭＰ一１贝０　

明显增多。表明有抑制兔耳瘢痕增生的作用。张恒术等　

（２００７）［４４３在兔耳创面上皮化后，外用脂质体包裹的辣椒素。　

发现用药１２ｈ后，脂质体组的增生块组织中，单位面积透皮　

实这是一种有效的抑制瘢痕增生制剂。确认兔耳瘢痕模型可　

以作为瘢痕研究的良好模型。Ｋｒｙｇｅｒ等（２００７）［２９３、Ｌｕ等　

（２００５）　在兔耳创面不同时间点检测ＴＧＦ　Ｂ　ｍＲＮＡ及Ｉ—Ｑ　２　

胶原。发现ＴＧＦ—Ｂ　、ＴＧＦ—Ｄ。在瘢痕增生过程中是高表达，证　

实它们与瘢痕增生的关系密切。Ｋｒｖｇｅｒ等（２００７）［。１３在兔耳制　

造５ｍｍ和７ｍｍ两种创面。在术后的７天、１５天两个时点，查明　

药量为软膏组的４．５倍。提示脂质体包裹的辣椒素可用于抗　

瘢痕治疗。赵文鲁等（２００９）Ｅ　将积雪草甙（三萜皂甙化合物）　

用于兔耳创面，通过抑制Ｔ细胞和巨噬细胞释放ｂＦＧＦ和抑　

两组组织学上无明显差异。但到创面产生后的第２８天，７ｍｍ　

创面组的瘢痕增生明显高于５ｍｍ组，而且７ｍｍ组的增生组织　

内ＴＧＦ—　ｍＲＮＡ和ＩＩ型胶原表达也高于５ｍｍ组。　

２用免耳模型对各类防治瘢痕的药物或制品进行疗效及作　

用机制的研究　

尤维涛等（２０００）＿３２　在兔耳模型上发现：局部注射维拉帕　

米组及曲安缩松组瘢痕增生块较低平，瘢痕增生指数及胶原　

纤维面密度都低于盐水组。与曲安缩松组相比，维拉帕米组　

的瘢痕增生指数较高。维拉帕米通过降低胶原含量仍可发挥　

抑制瘢痕效果。刘立强等（２００１）０　发现粉防己碱注射到兔耳　

创面后，成纤维细胞数量明显减少，但胶原含量明显下降。刘　

德伍等（２００１）［嘲在体外培养实验中，粉防己碱组的。Ｈ－ＴｄＲ掺　

入率和讯一脯氨酸掺入率均明显低于对照组。表明粉防己碱　

的抑瘢痕作用是通过对成纤维细胞的抑制和对其分泌胶原　

功能的阻抑而实现的。　

汤苏阳等（２００２）＿３　在兔模型上就苦参碱的抗瘢痕作用　

进行了系列研究。发现苦参碱组的增生块内成纤维细胞凋亡　

数量增多，凋亡相关调控蛋白ｂａｘ表达明显上调，而ｐ５３、　

ｂｃｌ一２表达则明显下调。提示苦参碱通过促使成纤维细胞加　

速凋亡而发挥抑止瘢痕增生效应。同一作者（２００２）口。　还发　

现，局部注射苦参碱后，兔耳瘢痕内成纤维细胞的活性明显　

受抑，增殖细胞核抗原ＰＣＮＡ表达明显减弱，嗜银核仁组织区　

染色（ＡｇＮＯＲｓ）记数显示明显减少。吴志远等（２００２）口　发现丹　

参酮¨Ａ注射后兔耳瘢痕增生受到明显抑制，其作用是通过　

抑制成纤维细胞的增殖并抑制胶原产生而呈现的。卞徽宁　

（２００４）［３８］在兔耳创面上，分别用ｂＦＧＦ浸液敷料覆盖并外加一　

层磺胺嘧啶银的敷料。认为ｂＦＧＦ既能促进伤口愈合，又能使　

愈合后组织减少瘢痕形成。类似的报道还有Ｘｉｅ（２００８）Ｅ羽］、　

Ｘｉｅ（２００８）等　］，将ｂＦＧＦ用于兔耳创面，证实可减少胶原沉　

积、ＭＭＰ１（基质金属蛋白酶一１）表达增高，并可使整合素　

ｏ　１　Ｂ　２下降，产生抑制瘢痕增生效果。　

李伟等（２００５）　证实青蒿琥酯钠有明显的抑制瘢痕增　

生作用。在２００９年又查明，用青蒿琥酯钠注入增生块内可以　

抑制兔耳创面中肥大细胞的含量，进而抑制成纤维细胞的增　

殖，抑制瘢痕增生。冯登超（２００８）＿４　则证实内服二氢蒿素组　

的兔耳增生块受到抑制。提示二氢蒿素有抑制瘢痕增生的功　

效。方荃等（２００７）发现仙人掌提取液能抑制创面的炎症反　

应，加速创面愈合，减少瘢痕的增生，促进瘢痕消退。国内学　

制成纤维细胞增殖、加速成纤维细胞凋亡，使ＴＧＦ—Ｄ　ｍＲＮＡ　

表达减少，因而抑制瘢痕增生。中国学者（２００９）　也报道了　

类似资料。发现其抑制瘢痕效应，表现为组织内的ＴＧＦ—Ｂ　明　

显减少，而瘢痕抑制因子Ｓｍａｄ７表达则明显增高。盛高铭等　

（２０１０）：　将细菌纤维素（一种新型生物敷料）用于兔耳创面，　

可加速创面愈合，减轻瘢痕的发生。邱竣等（２０１１）［搁也证实，　

细菌纤维素具有超高持水性，能使局部微环境稳定，减少皮　

肤水分蒸发，减少毛细血管充血，减少肥大细胞活性，进而减　

少胶原的沉积。王琳等（２００９）Ｅ蛔将肉毒毒素Ａ注入和外敷于　

兔耳创面，发现可减弱成纤维细胞的增殖能力，减少Ｉ、ＩＩＩ　

型胶原的合成，降低ｉ／ｉＩＩ型胶原的比值，抑制瘢痕的增殖。　

Ｌｅｅ等（２００５）Ｅ５田发现在上皮化后的兔耳增生块区，用脂质体　

包裹的ＩＦＮ后，瘢痕增生程度、厚度、瘢痕增生指数都低于单　

用脂质体组，提示有较好的抑制瘢痕的效果。Ｈｅｎｒｙ等（２００７）　

＿５”证实全身性注射ｍｉｎｏｅｙｃｌｉｎｅ（基质金属蛋白酶抑制剂），　

平均瘢痕增生指数比对照组减少８５％。Ｒｅｉｄ等（２ＯＯ６）＿５　在兔　

耳模型上测试了前胶原Ｃ一蛋白酶（ＰＣＰ）抑制剂抑制瘢痕增　

生的效应。发现后期组的瘢痕增生明显低于对照组。提示　

ＰＣＰ抑￥，Ｊ／ｆＪ，通过抑制胶原沉积产生抑制瘢痕增生的效果。Ｋｉｍ　

等（２００３）　在兔耳创面局部应用脯氨酰４羟化酶抑制剂　

ＦＧ一１６４８，结果低剂量者与对照组无差异，高剂量组的瘢痕　

增生指数比对照组减少２６％（Ｐ＜０．０１），表明可局部用于抑制　

瘢痕增生。Ｔａｎｄａｒａ等（２００８）吼　在兔耳模型上研究了硅凝胶　

膜抗瘢痕的机制。结果瘢痕高度指数（ＳＥＤ比对照组低７０％；　

表皮厚度指数（ＥＴＩ）未用硅胶膜组比正常皮肤增加１００％；而　

用药组表皮厚度下降３０％。提示硅胶膜通过水合作用，减少对　

表皮的刺激作用，发挥抑制瘢痕的效应。Ｇｉｓｑｕｅｔ等（２０１１）　

将兔疫调变剂Ｔａｃｒｏｌｉｍｕｓ注入兔耳创面，发现瘢痕增生指　

数仅为对照组的１／２，真皮厚度和炎性细胞数量明显低于对　

照组。Ｒａｈｍａｎｉ—Ｎｅｉｓｈａｂｏｏｒ等（２０１０）　调查了在兔耳创面应　

用ｓｔｒａｔｉｆｉｎ和ＡＳＡ对瘢痕增生的影响。两组瘢痕增生的容　

量分别比对照组减少８２％和７３％；组织细胞总数分别下降５７％　

和４１％：ＣＤ３Ｔ细胞分别减少７９％和９１％，ＭＭＰ一１表达为对照组　

的２．８倍，胶原浓度则下降４８％。表明ｓｔｒａｔｉｆｉｎ和ＡＳＡ有抑　

制瘢痕增生的作用。Ａｋｓｏｙ等（２０１０）Ｅ钢将４０％的氧化锌用于兔　

耳创面，证实可抑制兔耳瘢痕的增生。　

３在兔耳模型上检验某些物理因素对瘢痕增生的影响　

舒彬等（２００１）Ｅ　观察氦氖激光照射后，在术后３５天的　

１　１７６　ｒｒ『幽美容医学２０１１年７　ｊ第２０卷第７期Ｃｈｉｎｅｓｅ　Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ａｅｓｔｈｅｔｉｃ　Ｍｅｄｉｃｉｎｅ．Ｊｕ１．２０１１．Ｖ（）１．２０．Ｎ【ｌ＿７　

兔耳增生块增生程度比未照射组轻，外观变薄，组织内成纤　

维细胞捌亡数量增多，ＰＣＮＡ蛋白下调。滕雯等（２００７）Ｅ蜘观察　

了５９５ｎｍ　Ｖｂｅａｍ激光对成纤维细胞的影响。结果激光照射组　

ＰＣＮＡ表达明显弱于未照射组，成纤维细胞凋亡数量增多。提　

尔５９５ｎｍ激光通过抑制成纤维细胞的增殖，诱导细胞凋亡而　

产牛抑制瘢痕增生作用。工星武等（２００９）Ｅ　６ｏ３证实脉冲染料激　

光可以使兔耳创面的血管萎缩，成纤维细胞产生胶原量下　

降，凶而有抑瘢痕作用。Ｂｒｏｗｎ等（２００８）　在兔创面上，进行　

高剂量紫外线照射实验。发现经过紫外线７天照射后，增生　

块的容积比对照组减少５２％；照射１４天后比对照组容积减少　

７４％。Ｉ—Ｑ　２胶原ｍＲＮＡ表达比对照组低２９％（Ｐ＜Ｏ．０５），因而　

产生抑制瘢痕增生的效果。蔡宏等（２００７）ｃ　利用兔耳模型观　

察光动力学对瘢痕增生的影响，发现瘢痕增生的早期　

ＨＭＭＥ—ＰＤＴ（血卟啉单甲醚一光动力）能抑制瘢痕增生。肖燕等　

（２０１０）￣嘲应用第二代光敏剂５一氨基酮戊酸（５ＡＬＡ）和５８５ｎｍ　

染料激光处理兔耳创面，证实光动力学疗法尤其是当激光能　

量密度为７．５～８．０Ｊ／ｃｍ　时，抑制瘢痕的效果更佳。曾海峰等　

（２０１　１）Ｅ　亦查明，ＡＬＡ—ＰＤＴ通过抑制ＴＧＦ一１３而发挥抑瘢痕　

作用。　

４免耳瘢痕模型的应用已延伸到瘢痕基因治疗的层面　

宋宝强等（２００８）　６５￣７３在兔耳模型上研究了重组腺病毒血　

管抑制剂一１（ｋｄ—ＭＥＴＨ１）埘瘢痕增生的影响。将４０　Ｌ的　

Ａｄ—ＭＥＴＨ１分４个点注入每个瘢痕内；结果，注射后３Ｏ天，增　

块的颜色、质地已接近正常，而对照组仍处于明显增生状　

况：包块凸起、质硬、血管数量增多。ＨＥ染色显示注射组微血　

管数量减少，成纤维细胞分布松散，胶原排列有序；而对照组　

成纤维细胞多、微血管增加、胶原排列紊乱而粗大。结论：在　

兔耳模犁上证实，Ａｄ—ＭＥＴＨ１通过抑制增生块中的血管牛成，　

发挥抑制瘢痕增生的效能。同一作者（２００５）　此前曾在兔耳　

模型　观察了血管内皮抑制素（ＹＨ一１６）抑制瘢痕增生的效　

果。　实ＹＨ一１６通过抑制血管生成，产牛抗瘢痕效果。张华彬　

等（２００７）　同样在兔耳模型上证实了Ａｄ—ＭＥＴＨＺ的抑制瘢痕　

效应。哈小琴等（２００３）Ｅ　将携带人肝细胞牛长因子的基因重　

组腺病毒（Ａｄ—ＨＧＦ）一次性注入兔耳增生块内。发现注射后３２　

大增　块明显缩小、变薄，且呈剂量依赖性，真皮层纤维组织　

明显减少，认为Ａｄ—ＨＧＦ可用于瘢痕和治疗。国外学者Ｒｅｉｄ　

等（２００７）　在兔耳模型上观察Ｋｅｔｒｏｖｉａｌ基因治疗，通过阻　

抑ＴＧＦ一日产生的抗瘢痕增生效应，得到肯定的结论。　

５在重复、验证、应用免耳瘢痕模型的同时，一些学者还在　

改进和提高模型的质量上进行了探索　

作为一种新出现的创伤研究动物模型，尽管ＭｏｒｒｉＳ和　

舍荟　等通过人量实验，表明它是一种良好的瘢痕研究动物　

模型，存喇内外已有众多学者应用此模型进行多方面研究，　

并曰＿获得肯定的效果。而且此模型已被一些研究生培养单位　

采用作为完成课题的实验工具。然而，兔耳模型仍然还有一　

定的局限性。如：兔耳创面瘢痕增生率还有进‘步提舟的　

问；兔耳创面持续时间还有延长的可能；而且，　今还未能发　

现类似瘢痕疙瘩样的病理改变等。国内学者在提高兔耳瘢痕　

模型质量上进行了有益的探索。舒彬等（２００１）［７２　实：术后　

２１天，瘢痕增生率为７６％，３５天达瘢痕增牛高峰期。　３５人，　

羟脯氨酸含量为正常值的３倍，术后９８天，仍高于【　常皮ｊＪ大　

值。结论是兔耳增生块与人类增生性瘢痕有相似性。川一作　

者（２００２）　在一篇英文资料中验证了兔耳瘢痕模型的　＿ｆ　Ｈ］　

性。邢帮荣等（２００４）　为了观察兔耳腹面与兔耳背　出现增　

生瘢痕块的差异，结果兔耳腹面瘢痕增生率为７１％，其　，以　

耳腹面的中部瘢痕增生最为显著，而且持续时间剑伤ｌ　　Ｉ皮　

化后１５０天。但兔耳背面瘢痕增生率还不剑３０％，平均持续时　

间不超过７６天。作者结论：兔耳腹面尤其是耳中部，　以　

生类似人类增生性瘢痕样的病理改变，呵望成为研究瘢痕的　

动物模型。朱桂英等（２００８）　认为在制作兔耳瘢痕模　时，　

宜选择兔耳腹面的中、下部，以距离耳尖３～６ｃｍ、　：耳　、外　

侧缘１．５ｃｍ处为最佳部位。将耳软骨膜切除呵提高搬痕增，｛　

率至９５％，瘢痕增生指数高，持续时间也长。冯　超等（２００９）　

７目经过对兔耳瘢痕模型的改进，使免耳瘢痕增生率提高剑　

９１．７％（第２８天），至第５６天兔耳瘢痕增ｑｔ率仍保持８３．３％．这就　

大大提升了兔耳瘢痕模型在创伤研究中的实用性。　

此外，还有　一些学者在进行相关研究，或逃行创伤　动　

物实验模型有关文献综述或资料分析时，引用ｌｒ我们发表的　

有关兔耳模型研究的资　，为我们对兔耳瘢痕模掣的进　

一

步研究和改进提供了有益的参考。　

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性的影响［Ｊ］．中国美容医学，２００４，ｌ３（２）：１４０．１４２．　

［１８］罗梅，陈彦斌，汤小琴．反义ＴＧＦ一１对兔耳增生性瘢痕抑制作用　

的组织形态学研究［Ｊ］＿中华临床新医学，２００３，３（７）：５７７—５７８　

［１９］任丽虹，肖志波，滕雯，等．反义结缔组织生长因子对增生性瘢痕动　

物模型的抑制作用［Ｊ］．中国美容医学，２００８，１７：１７７３—１７７５．　

［２０］李颖，王继华，何永静，等．ＴＮＦ．ａ抑制兔耳瘢痕增生的实验研究　

［Ｊ］．中国美容医学，２００９，１８（６）：８２８—８３１．　

［２１１张阳，柳大烈，李希军，等．注射透明质酸对兔耳瘢痕中羟脯氨酸含　

量的影响［Ｊ］．西安医科大学学报，２００１，２２（５）：４６３—４６３．　

［２２］张阳，柳大烈，李希军，等．Ｖａｒｉａｔｉｏｎ　ｏｆｈｙｄｒｏｘｙｐｒｏｌｉｎｅ　ｃｏｎｔｅｎｔ　ａｆｔｅｒ　

ｌｏｃａｌ　ｉｎｊｅｃｔｉｏｎ　ｈｙａｌｕｒｏｎｉｃ　ａｃｉｄ　ｉｎ　ｅｘｃｅｓｓｉｖｅ　ｄｅｒｍａｌ　ｓｃａｒｏｆ　ｒａｂｂｉｔ　

ｅａｒｓ［Ｊ］．Ｊ　Ｆｏｕ￣ｈ　Ｍｉｌ　Ｍｅｄ　Ｕｎｉｖ，２００２，２３（３）：２２７—２３０．　

［２３］李希军，柳大烈，王吉慧，等－夕　源性透明质酸对兔耳创面胶原代谢　

的影响［Ｊ］．实用美容整形外科杂志，２００１，ｌ２（３）：１５２—１５３．　

［２４１李希军，柳大烈，张阳．透明质酸及透明质酸酶对兔耳创面增生性　

瘢痕形成影响的对比研究［Ｊ］．中华医学美学美容杂志，２００１，７（４）：　

１９４—１９７．　

［２５］刘莺，郝立君，庞建华，等．探讨硫酸软骨素酶在兔耳增生性瘢痕模　

型中的作用［Ｊ］．中国美容整形外科杂志，２００６，１７（５）：３３６—３３９．　

［２６】邱林，金先庆，Ｐａｕｌ　Ａ　Ｋｉｎｇｓｔｏｎ，等．基因修饰ＢＭＳＣＳ抑增生性瘢　

痕的实验研究［Ｊ］．中国修复重建外科杂志，２００８，２２：２１２—２１６．　

［２７１Ｌｉ　Ｐ，Ｌｉｕ　Ｐ，Ｘｉｏｎｇ　ＲＰ，ｅｔ　ａ１．Ｓｋｉ，ａ　ｍｏｄｕｌａｔｏｒ　ｏｆ　ｗｏｕｎｄ　ｈｅａｌｉｎｇ　ａｎｄ　

ｓｃａｒ　ｆｏｒｍａｔｉｏｎ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｒａｔ　ｓｋｉｎ　ａｎｄ　ｒａｂｂｉｔ　ｅａｒ［Ｊ］ｌＰａｔｈｏｌ，２０１　１，２２３：　

６５９—６７１．　

［２８］Ｓａｕｌｉｓ　ＡＳ，Ｍｇｆｏｒｄ　ＪＨ，Ｍｕｓｔｏｅ　ＴＡ．Ｅｆｆｅｃｔ　ｏｆ　Ｍｅｄｅｒｍａ　ｏｎ　

ｈｙｐｅｒｔｒｏｐｈｉｃ　ｓｃａｒｒｉｎｇ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｒａｂｂｉｔ　ｅａｒ　ｍｏｄｅｌ　［Ｊ］．　

Ｐｌａｓｔ　Ｒｅｃｏｎｓｔｒ　Ｓｕｒｇ，２００２，１　１０：１７７－１８２．　

［２９］Ｋｒｙｇｅｒ　ＺＢ，Ｓｉｓｃｏ　Ｍ，Ｒｏｙ　ＮＫ，ｅｔ　ａ１．Ｔｅｍｐｏｒａｌ　ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ　ｏｆ　ｔｈｅ　

ｔｒａｎｓｆｏｒｍｉｎｇ　ｇｒｏｗｔｈ　ｆａｃｔｏｒ－Ｂｅｔａ　ｐａｔｈｗａｙ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｒａｂｂｉｔ　ｅａｒ　ｍｏｄｅｌ　ｏｆ　

ｗｏｕｎｄ　ｈｅａｌｉｎｇ　ａｎｄ　ｓｃａｒｒｉｎｇ［Ｊ］．Ｊ　Ａｍ　Ｃｏｉｌ　Ｓｕｒｇ，２００７，２０５（１）：７８—８８．　

［３０］Ｌｕ　Ｌ，Ｓａｕｌｉｓ　ＡＳ，Ｌｉｕ　ＷＲ，ｅｔ　ａ１．Ｔｈｅ　ｔｅｍｐｏｒａｌ　ｅｆｆｅｃｔｓ　ｏｆ　

ａｎｔｉ—ＴＧＦ—ｂｅｔａｌ，２，ａｎｄ　３　ｍｏｎｏｃｌｏｎａｌ　ａｎｔｉｂｏｄｙ　ｏｎ　ｗｏｕｎｄ　ｈｅａｌｉｎｇ　

ｎａｄ　ｈｙｐｅｒｔｒｏｐｈｉｃ　ｓｃａｒ　ｆｏｒｍａｔｉｏｎ［Ｊ］＿Ｊ　Ａｍ　Ｃｏｉｌ　Ｓｕｒｇ，２００５，２０１（３）：　

３９ｌ一３９７．　

［３　ｌｌＫｒｙｇｅｒ　ＺＢ，Ｓｉｓｃｏ　Ｍ，Ｒｏｖ　ＮＫ，ｅｔ　ａ１．Ｔｅｍｐｏｒａｌ　ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ　ｏｆ　ｔｈｅ　

ｔｒａｎｓｆｏｒｍｉｎｇ　ｒｇｏｗｔｈ　ｆａｃｔｏｒ—Ｂｅｔａ　ｐａｔｈｗａｙ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｒａｂｂｉｔ　ｅａｒ　ｍｏｄｅｌ　ｏｆ　

ｗｏｕｎｄ　ｈｅａｌｉｎｇ　ａｎｄ　ｓｃａｒｒｉｎｇ［Ｊ］－Ｊ　Ａｍ　Ｃｏｉｌ　Ｓｕｒｇ．２００７．２０５：７８－８８．　

［３２］尤维涛，秦泽莲，牛星焘，等．维拉帕米对兔耳增生性瘢痕作用的实　

验研究［Ｊ］．中华医学美容杂志，２０００，６（５）：２５２—２５５．　

［３３］刘立强，张作峰，刘德伍，等．粉防已碱对兔耳瘢痕组织作用的实验　

研究［Ｊ］．江西医学院学报，２００１，４１（４）：２９—３１．　

［３４］刘德伍，李国辉，刘德明，等．粉防已碱对瘢痕成纤维细胞的生物作　

用［Ｊ］ｌ江西医学院学报，２００１，４１（３）：４—６．　

［３５］汤苏阳，蔡宝仁，徐荻荣，等．苦参碱对增生性瘢痕成纤维细胞凋亡　

及相关调控蛋白表达的影响ｆＪＪ．中华烧伤杂志，２００２，】８（５）：　

２９９—３０２．　

［３６１汤苏阳，蔡宝仁，王远征．苦参碱对兔耳增生性瘢痕成纤维细胞增　

生活性抑制作用［Ｊ］．中国临床康复，２００２，６（４）：５１０．５１１．　

［３７］吴志远，罗少军，汤少明，等．丹参酮ＩＩＡ对兔耳增生性瘢痕组织形　

成的影响［Ｊ】ｌ广东医学院学报，２００２，２０（４）：２５５，２５９．　

【３８］卞徽宁．碱性成纤维细胞因子对兔耳增生性瘢痕形成的影响［Ｊ］．　

中华创伤杂志，２００４，２０（４）：２４２．２４５．　

［３９］Ｘｉｅ儿，Ｂｉａｎ　ＨＮ，Ｑｉ　ＳＨ，ｅｔ　ａ１．Ｂａｓｉｃ　ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔ　ｇｒｏｗｔｈ　ｆａｃｔｏｒ（ｂＦＧＦ）　

ａｌｌｅｖｉａｔｅｓ　ｔｈｅ　ｓｃａｒ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｒａｂｂｉｔ　ｅａｒ　ｍｏｄｅｌ　ｉｎ　ｗｏｕｎｄ　ｈｅａｌｉｎｇ［Ｊ］ｌ　

Ｗｏｕｎｄ　Ｒｅｐａｉｒ　Ｒｅｇｅｎ，２００８，１６：５７６－５８１．　

［４０］Ｘｉｅ　Ｊ，Ｑｉ　Ｓ，ＸｕＹ，ｅｔ　ａ１．Ｅｆｆｅｃｔｓ　ｏｆ　ｂａｓｉｃ　ｆｉｂｒｏｂｌａｓｔ　ｇｒｏｗｔｈ　ｆａｃｔｏｒｓ　ｏｎ　

ｈｙｐｅｒｔｒｏｐｈｉｃ　ｓｃａｒｒｉｎｇ　ｉｎ　ａ　ｒａｂｂｉｔ　ｅａｒ　ｍｏｄｅｌ［Ｊ］ＩＪ　Ｃｕｔａｎ　Ｍｅｄ　Ｓｕｒｇ，　

２００８，１２：１５５—１６２．　

［４１］李伟，石崇荣，曹治东．青蒿琥酯钠对兔耳增生性瘢痕胶原的影响　

［Ｊ］．中华整形外科杂志，２００５，２１（２）：１５８—１５９．　

［４２］冯登超，贺光照，江川，等．二氢青蒿素抑制兔耳瘢痕增生的实验研　

究［Ｊ］ｌ中国美容医学，２００８，１７（３）：３８０—３８２．　

［４３］Ｗｅｉ　ＹＪ，Ｙａｎ　ＸＱ，Ｍａ　Ｌ，ｅｔ　ａ１．Ｏｌｅａｎｏｌｉｃ　ａｃｉｄ　ｉｎｈｉｂｉｔｓ　ｈｙｐｅｒｔｒｏｐｈｉｃ　

ｓｃａｒｒｉｎｇ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｒａｂｂｉｔ　ｅａｒ　ｍｏｄｅｌ［Ｊ］．Ｃｌｉｎ　Ｅｘｐ　Ｄｅｒｍａｔｏｌ，２０１１，１１１１：　

ｌ３６５—１３６９．　

［４４］张恒术，白铭，黄崇本．辣椒素脂质体在兔耳增生性瘢痕组织中的　

透皮吸收研究　．中国美容医学，２００７，１６（７）：８８１—８８４．　

［４５］赵文鲁，匡瑞霞，刘肃，等．积血草甙对兔耳增生性瘢痕ＴＧＦ．１ｍＲ　

ＭＡ表达的影响［Ｊ］．中国美容医学，２００９，１８（１）：７２．７５．　

［４６］Ｊｕ—Ｌｉｎ　Ｘ，Ｓｈａｏ－Ｈａｉ　Ｑ，Ｔｉａｎ—Ｚｅｎｇ　Ｌ，ｅｔ　ａ１．Ｅｆｆｅｃｔ　ｏｆ　ａｓｉａｔｉｃｏｓｉｄｅ　ｏｎ　

ｈｙｐｅｒｔｒｏｐｈｉｃ　ｓｃａｒ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｒａｂｂｉｔ　ｅａｒ　ｍｏｄｅｌ［Ｊ］．Ｊ　Ｃｕｔａｎ　Ｐａｔｈｏｌ，２００９，３６：　

２３４—２３９．　

［４７１盛高铭，柳大烈，张阳，等．外用细菌纤维素影响免耳创面愈合的形　

态学及组织学观察［Ｊ］．中国美容医学，２０１０，１９（１２）：１８１　１－１８１４．　

［４８］邱竣，柳大烈，张阳，等．细菌纤维素对兔耳增生性瘢痕中关羟脯　

氨酸含量的影响Ⅲ．中国美容医学，２０１１，２０（１）：８６—８９．　

［４９］ｔ琳，邰宁正，范志宏．Ａ型肉毒毒素局部应用对兔耳增生性瘢痕　

创面愈合和瘢痕增生的影响［Ｊ］．中华整形外科杂志，２００９，２５（４）：　

２８４—２８６．　

［５０］Ｌｅｅ　ＪＰ，Ｊａｌｉｌｉ　ＲＢ，Ｔｒｅｄｇｅｔ　ＥＥ，ｅｔ　ａ１．Ａｎｔｉｉｆｂｒｏｇｅｎｉｃ　ｅｆｆｅｃｔｓ　ｏｆ　

ｌｉｐｏｓｏｍｅ－－ｅｎｃａｐｓｕｌａｔｅｄ　ＩＦＮ・－ａｌｐｈａ２ｂ　ｃｒｅａｍ　ｏｎｓｋｉｎ　ｗｏｕｎｄｓｉｎ　ａ　

ｉｆｂｒｏｔｉｃ　ｒａｂｂｉｔ　ｅａｒ　ｍｏｄｅｌ［Ｊ］－Ｊ　Ｉｎｔｅｒｆｅｒｏｎ　Ｃｙｔｏｋｉｎｅ　Ｒｅｓ，２００５，２５（１Ｏ）：　

６２７—６３１．　

［５１］Ｈｅｎｒｙ　ＳＬ，Ｃｏｎｃａｎｎｏｎ　ＭＪ，Ｋａｐｌａｎ　ＰＡ，ｅｔ　ａ１．Ｔｈｅ　ｉｎｈｉｂｉｔｏｒｙ　ｅｆｆｅｃｔ　ｏｆ　

ｍｉｎｏｃｙｃｌｉｎｅ　ｏｎ　ｈｙｐｅｒｔｒｏｐｈｉｃ　ｓｃａｒｒｉｎｇ［Ｊ］ｌ　Ｐｌａｓｔ　Ｒｅｃｏｎｓｔｒ　Ｓｕｒｇ．　

２００７，１２０（１）：８０—８８．　

１１７８　中国美容医学２０１１年７月第２Ｏ卷第７期Ｃｈｉｎｅｓｅ　Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆＡｅｓｔｈｅｔｉｃＭｅｄｉｃｉｎｅ．Ｊｕ１．２０１１．Ｖｏ１．２０．Ｎｏ．７　

［５２］Ｒｅｉｄ　ＲＲ，Ｍｏｇｆｏｒｄ　ＪＥ，Ｂｕｔｔ　Ｒ，ｅｔ　ａ１．Ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎ　ｏｆ　ｐｒｏｃｏｌｌａｇｅｎ　

Ｃ・ｐｒｏｔｅｉｎａｓｅ　ｒｅｄｕｃｅｓ　ｓｅａｌ＂ｈｙｐｅｒｔｒｏｐｈｙ　ｉｎ　ａ　ｒａｂｂｉｔ　ｍｏｄｅｌ　ｏｆ　

（１）：　７Ｏ一７４．　

［６６］宋保强，鲁开化，郭树忠，等．血管抑制因子ＭＥＴＨ１基因转染对　

兔耳瘢痕组织增生的影响［Ｊ］．中华整形外科杂志，２００８，２４（２）：　

１４８一ｌ５Ｏ．　

ｃｕｔａｎｅｏｕｓ　ｓｃａｒｒｉｎｇ［Ｊ］．ＷｏｕｎｄＲｅｐａｉｒＲｅｇｅｎ，２００６，１４（２）：１３８－１４１．　

［５３］Ｋｉｍ　Ｉ，Ｍｏｇｆｏｒｄ　ＪＥ，Ｗｉｔｓｃｈｉ　Ｃ，ｅｔ　ａ１．Ｉｎｈｉｂｉｔｉｏｎ　ｏｆｐｒｏｌｙｌ　４－ｈｙｄｒｏｘｙｌａｓｅ　

ｒｅｄｕｃｅｓ　ｓｅａｌ－ｈｙｐｅｒｔｒｏｐｈｙ　ｉｎ　ａ　ｒａｂｂｉｔｍｏｄｅｌ　ｏｆ　ｃｕｔａｎｅｏｕｓ　ｓｃａｒｒｉｎｇ［Ｊ］．　

Ｗｏｕｎｄ　Ｒｅｐａｉｒ　Ｒｅｇｅｎ，２００３，１　１（５）：３６８—３７２．　

［５４］Ｔａｎｄａｒａ　ＡＡ，Ｍｕｓｔｏｅ　ＴＡ．Ｔｈｅ　ｒｏｌｅ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｅｐｉｄｅｒｍｉｓ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｃｏｎｔｒｏｌ　ｏｆ　

ｓｃａｒｒｉｎｇ：ｅｖｉｄｅｎｃｅ　ｆｏｒ　ｍｅｃｈａｎｉｓｍ　ｏｆａｃｔｉｏｎ　ｆｏｒ　ｓｉｌｉｃｏｎｅ　ｇｅｌ［Ｊ］．Ｊ　Ｐｌａｓｔ　

Ｒｅｃｏｎｓｔｒ　Ａｅｓｔｂｅｔ　Ｓｕｒｇ，２００８，６０：１２１９—１２２５．　

［６７］Ｓｏｎｇ　Ｂ，Ｚｈａｎｇ　Ｗ，Ｇｕｏ　ｓ，ｅｔ　ａ１．Ａｄｅｎｏｖｉｒｕｓ—ｍｅｄｉａｔｅｄ　ＭＥＴＨ１　ｇｅｎｅ　

ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ　ｉｎｈｉｂｉｔｓ　ｈｙｐｅｒｔｒｏｐｈｉｃ　ｓｃａｒｒｉｎｇ　ｉｎ　ｒａｂｂｉｔ　ｅａｒ　ｍｏｄｅｌ［Ｊ］．　

Ｗｏｕｎｄ　Ｒｅｐａｉｒ　Ｒｅｇｅｎ，２００９，１７：５５９—５６８．　

［６８］宋保强，鲁开化，郭树忠，等．兔耳增生性瘢痕与血管内皮抑制素的　

抑制［Ｊ］．中国临床康复，２００５，９（１８）：１ｌ１一ｌ１３．　

［６９］张华彬，宋保强，鲁开化，等．血管抑制剂基因治疗对增生性瘢痕的　

病理学影响［Ｊ］．中国美容医学，２００７，１６（１０）：１３３４—１３３６．　

［７０］哈小琴，苑宾，李元敏，等．重组腺病毒介导人肝细胞生长因子在病　

理性瘢痕基因治疗研究中的应用［Ｊ］．中国科学，２００３，３３（１）：６５．７０．　

［７１］Ｒｅｉｄ　ＲＲ，Ｒｏｙ　Ｎ，Ｍｅｇｆｏｒｄ　ＪＥ，ｅｔ　ａ１．Ｒｅｄｕｃｔｉｏｎ　ｏｆ　ｈｙｐｅｒｔｒｏｐｈｉｃ　ｓｅａｌ＂　

ｖｉａ　ｒｅｔｒｏｖｉｒａｌ　ｄｅｌｉｖｅｒｙ　ｏｆ　ａ　ｄｏｍｉｎａｎｔ　ｎｅｇａｔｉｖｅ　ＴＧＦ－ｂｅｔａ　ｒｅｃｅｐｔｏｒ　ＩＩ　

［５５］Ｇｉｓｑｕｅｔ　Ｈ，ＬｉｕＨ，Ｂｌｏｎｄｅｌ　ＷＣ，ｅｔ　ａ１．ｎｔＩｒａｄｅｒｍａｌ　ｔａｃｒｏｌｉｕｍｓ　ｐｒｅｖｅｎｔ　

ｓｃａｒ　ｈｙｐｅｒｔｒｏｐｈｙ　ｉｎ　ａ　ｒａｂｂｉｔ　ｅａｒ　ｍｏｄｅｌ：ａ　ｃｌｉｎｉｃａｌ，ｈｉｓｔｏｋ｝ｇｉｃａｌ　ａｎｄ　

ｓｐｅｃｔｒｏｓｃｏｐｉｃａｌａｎａｌｙｓｉｓ［Ｊ］．ＳｋｉｎＲｅｓＴｅｃｈｎｏｌ，２０１１，ｌ１ｌｌ：１６００一ｌ６０４．　

【５６］Ｒａｈｍａｎｉ—Ｎｅｉｓｈａｂｏｏｒ　Ｅ，Ｙａｕ　ＦＭ，Ｊａｌｉｌｉ　Ｒ．Ｉｍｐｒｏｖｅｍｅｎｔ　ｏｆ　

ｈｙｐｅｒｔｒｏｐｈｉｃ　ｓｃａｒｒｉｎｇ　ｂｙ　ｕｓｉｎｇ　ｔｏｐｉｃａｌ　ａｎｔｉ—ｉｂｒｏｇｅｎｉｆｃ／ａｎｔｉ—　

ｉｎｆｌａｍｍａｔｏｒ　ｆａｃｔｏｒｓ　ｉｎ　ａ　ｒａｂｂｉｔ　ｅａｒ　ｍｏｄｅｌ［Ｊ］．Ｗｏｕｎｄ　Ｒｅｐｉａｒ　Ｒｅｇｅｎ，　

２０１０，１８：４０１—４０６．　

［Ｊ］．Ｊ　Ｐｌａｓｔ　Ｒｅｃｏｎｓｔｒ　Ａｅｓｔｈｅｔ　Ｓｕｒｇ，２００７，６０（１）：６４—７２．　

［５７］Ａｋｓｏｖ　Ｂ，Ａｔａｋａｎ　Ｎ，Ａｋｓｏｖ　ＨＭ，ｅｔ　ａ１．ｅｆｆｅｃｔｉｖｅｎｅｓｓ　ｏｆ　ｔｏｐｉｃａｌ　ｚｉｎｃ　

ｏｘｉｄｅ　ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎ　ｏｎ　ｈｙｐｅｒｔｒｏｐｈｉｃ　ｓｅａｌ＂ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ　ｉｎ　ｒａｂｂｉｔｓ［Ｊ］ｌ　

Ｂｕｍｓ，２０１０，３６：１０２７－１０３５．　

［７２］舒彬，郝林林，吴宗耀，等．兔耳增生性瘢痕的形态学观察与羟脯氨　

酸含量变化［Ｊ］．第三军医大学学报，２００１，２３（３）：３４３．３４５．　

［７３１舒彬，郝林林，吴宗耀，等．Ｍｏｒｐｈｏｌｏｇｉｃａｌ　ｏｂｓｅｒｖａｔｉｏｎ　ａｎｄ　ｃｈａｎｇｅｓ　

ｏｆｈｙｄｒｏｘｙｐｒｏｌｉｎｅ　ｃｏｎｔｅｎｔ　ｉｎ　ｈｙｐｅｒｔｒｏｐｈｉｃ　ｓｅａｌ＂ｏｆｒａｂｂｉｔｓ　ｅａｒｓ［Ｊ］．中　

国临床康复２００２，６（６）：１２２６．１２２７．　

［７４］邢帮荣，利天增，卞徽宁，等．建立一种兔耳增生性瘢痕的动物模型　

［Ｊ］．中华实验外科杂志，２００４，２１（２）：２２４—２２５．　

［７５１朱桂英，徐斌，蔡景龙．兔耳解剖特点与成功建立增生性瘢痕模型　

的相关性实验研究［Ｊ］．中华整形外科杂志，２００８，２４（３）：２１６．２１９．　

［７６］冯登超，杨喜明，薛宏斌，等．建立更加稳定和有效的兔耳瘢痕模　

型［Ｊ］．中国美容医学，２００９，１８（２）：１９１．１９４．　

［７７］向军，刘英开，陆树良，等．兔无细胞真皮基质的研究［Ｊ】＿上海第二　

医科大学学报，２００３，２３（３）：２２３．２２６．　

［５８１舒彬，郝林林，吴宗耀，等．大功率氦氖激光治疗增生性瘢痕的实验　

研究［Ｊ］．中华理疗杂志，２００２，４（５）：２７７－２７９．　

［５９１滕雯，郝立君，任丽虹，等．５９５ｎｍ激光对兔耳瘢痕成纤维细胞增殖　

与凋亡的影响［Ｊ】＿中国美容医学，２００７，１６（８）：１０３５—１０３８．　

［６０］ｔ星武，孙晓燕，郭党学，等．Ｖｐ５３２ｎｍ激光治疗兔耳增生性瘢痕的　

实验研究［Ｊ］＿中国美容医学，２００９，１８（２）：２０７—２０９．　

［６１］Ｂｒｏｗｎ　ＩＵ，Ｌｅｅ　ＭＪ，Ｓｉｓｃｏ　Ｍ，ｅｔ　ａ１．Ｈｉｇｈ－Ｄｏｓｅ　Ｕｌｔｒａｖｉｏｌｅｔ　ｌｉｇｈｔ　

ｅｘｐｏｓｕｒｅ　ｒｅｄｕｃｅｓ　ｓｅａｌ＂ｈｙｐｅｒｔｒｏｐｈｙ　ｉｎ　ａ　ｒａｂｂｉｔｅａｒ　ｍｏｄｅｌ［Ｊ］．Ｐｌａｓｔ　

Ｒｅｃｏｎｓ￣Ｓｕｒｇ，２００８，１２１：ｌ１６５—１１７２．　

［６２］蔡宏，顾瑛，曾晶，等．光动力学疗法对兔耳增生性瘢痕作用的初　

步研究［Ｊ］．中华整形外科杂志，２００７，２３（５）：４２５．４２７．　［７８１姜永能，漆雪梅，曹剑鸣，等．放射性核素９０Ｓｒ防治瘢痕的研究【Ｊ］．　

［６３］肖燕，林军，欧阳天祥．光动力学疗法对兔耳增生性瘢痕的影响　

［Ｊ］．中国美容医学，２０１０，１９（８）：ｌ　１６１—１　１６３．　

［６４】曾海峰，韩晓霞，刘蓓，等．他克莫司抑制兔耳增生性瘢痕的作用及　

其机制研究［Ｊ】．中国美容医学，２０１　１，２０（１）：６８—７０．　

［６５１宋保强，鲁开化，张阳，等．免耳增生性瘢痕血管生成及腺病毒转基　

因重组血管生成抑制因子１［Ｊ］．中国修复重建外科杂志，２００８，２２　

中华医学美学美容杂志，２００２，８（２）：８６—８９．　

［７９］杨东运，李世荣．增生性瘢痕和瘢痕疙瘩动物模型的研究现状［Ｊ］．　

中华整形外科杂志，２００３，１９（１）：６０—６１．　

［收稿日期］２０１　１－０４—２０　［修回日期］２０１　１－０６．２２　

编辑／李阳利　

湿性脂肪干细胞辅助自体脂肪移植术　

Ａｐｐｌｉｃａｔｉｏｎ　ｏｆ　ａｕｔｏｌｏｇｏｕｓ　ｆａｔ　ｔｒａｎｓｐｌａｎｔａｔｉｏｎ　ｗｉｔｈ　ｔｈｅ　ｓｕｐｐｌｅｍｅｎｔ　ｏｆ　ｆａｔ　ｓｔｅｍ　ｃｅｌｌｓ　ｈａｒｖｅｓｔｅｄ　

ｂｙ　ｔｈｅ　ｔｕｍｅｓｃｅｎｔ　ｌｉｐｏｓｕｃｔｉｏｎ　

刘乃军　管延萍。王艳　综述，黄金井。审校　

（１．广东省珠海博爱妇产医院整形美容外科广东　珠海　５１９００１；２．珠海市三灶人民医院妇产科广东珠海５１　９０４１；３．中　

１　００１４４）　国医学科学院北京整形外科医院北京

１９７７年，Ｉｌｌｏｕｚ开创了钝性（ｂｌｕｎｔ　ｃａｎｕａ１）及湿性技　

药物干性技术（ｄｒｙ　ｔｅｃｈｎｉｑｕｅ）吸脂术，因并发症太多早已　

无人使用。１９８６年，Ｆｏｄｏｒ发展了湿性技术，１９８７年，Ｋｌｅｉｎ　

首先提出肿胀技术＿ｌ＿。１９８６年，Ｉｌｌｏｕｚ在湿性技术吸脂术基　

术（ｗｅｔ　ｔｅｃｈｎｉｑｕｅ）吸脂术先河，此后众多整形外科医师采　

用并发展了该技术。１９８３年，Ｆｏｕｒｎｉｅｒ提出不注射任何液体　

本文标签： 瘢痕增生抑制