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2024年6月4日发(作者:)

中国应用生理学杂志,2021,37(5)

459

38(9):19861996.

[11]LuX,GongJ,DenneryPA,etal.Endothelialtomes

:Pathogenesisandtherapeutictargetsenchymaltransition

forchronicpulmonaryandvasculardiseases[J].Biochem

Pharmacol,2019,168:100107.

[12]蒋 荣,陈明霞.二氧化硅诱导的内皮间质转化参与

矽肺纤维化的实验研究[J].现代预防医学,2020,

47(9):16651669.

[13]HashimotoN,PhanSH,ImaizumiK,etal.Endothelial

mesenchymaltransitioninbleomycininducedpulmonary

fibrosis[J].AmJRespirCellMolBiol,2010,43(2):

161172.

[14]JiangY,ZhouX,HuR,etal.TGF1inducedSMAD

β

2/3/4activationpromotesRELMranscriptiontomod

β

ulatetheendotheliummesenchymaltransitioninhuman

endothelialcells[J].IntJBiochemCellBiol,2018,

105:5260.

[15]SabbineniH,VermaA,SomanathPR.Isoformspecific

effectsoftransforminggrowthfactornendothelialto

β

mesenchymaltransition[J].JCellPhysiol,2018,233

(11):84188428.

[16]PieraVelazquezS,LiZ,JimenezSA.Roleofendotheli

almesenchymaltransition(EndoMT)inthepathogenesis

offibroticdisorders[J].AmJPathol,2011,179(3):

10741080.

[17]涂容芳,张秀峰,何振华.5HTR2B、Ecad、SMA在

α

博莱霉素致大鼠肺纤维化中的表达变化[J].中国应

用生理学杂志,2016,32(4):365369.

lungparenchymaandimplicationsfortherapy[J].Pharm

Res,2007,24(5):819841.

[3] KingTEJr,PardoA,SelmanM.Idiopathicpulmonary

fibrosis[J].Lancet,2011,378(9807):19491961.

[4] HashimotoN,PhanSH,ImaizumiK,etal.Endothelial

mesenchymaltransitioninbleomycininducedpulmonary

fibrosis[J].AmJRespirCellMolBiol,2010,43(2):

161172.

[5] KruzliakP,HareDL,ZvonicekV,etal.Simvastatin

impairstheinductionofpulmonaryfibrosiscausedbya

westernstylediet:apreliminarystudy[J].JCellMol

Med,2015,19(11):26472654.

[6] WeisM,HeeschenC,GlassfordAJ,etal.Statinshave

biphasiceffectsonangiogenesis[J].Circulation,2002,

105(6):739745.

[7] 田 晟,曹文富,张永越,等.益气化瘀化痰方对肺

纤维化大鼠的干预作用及其机制[J].中国应用生理

学杂志,2019,35(2):101106.

[8] SinghS,AdamM,MatkarPN,etal.Endothelialspecif

iclossofIFT88promotesendothelialtomesenchymal

transitionandexacerbatesbleomycininducedpulmonary

fibrosis[J].SciRep,2020,10(1):114.

[9] WeinsteinN,MendozaL,AlvarezBuyllaER.Acompu

tationalmodeloftheendothelialtomesenchymaltransi

tion[J].FrontGenet,2020,11:40.

[10]HulshoffMS,XuX,KrenningG,etal.Epigeneticregu

lationofendothelialtomesenchymaltransitioninchronic

heartdisease[J].ArteriosclerThrombVascBiol,2018,

利用全细胞膜片钳技术记录大鼠脑片NMDA电流的研究

,2,2,2,2,2,2,2,2,2

黄燕云

,高 洁

,张利娜

,杜相欣

,张雨彤

,郭 霞

,郝 娜

,李建国

,张 宇

(1.细胞生理学教育部重点实验室,2.山西医科大学生理学系,太原030001)

【摘要】 目的:采用全细胞膜片钳技术记录大鼠脑片实验中NMDA电流,并介绍诱发NMDA电流的自制刺激电极制作方法。方

分别通过含受体激动剂NMDA的孵育液灌流和电刺激诱发NMDA电流两法:在大鼠目标脑区快速取材并获取活性良好的脑片,

种方式进行膜片钳记录;利用针灸针自制刺激电极。结果:通过记录到大鼠脑片神经元的EPSC和AP可判断神经元的状态,比

MDA电流幅度,即直接灌流受体激动剂NMDA(282.0±24.3)pA和自制刺激电极诱发(261.4±40.1)pA,二较两种方法诱导的N

者电流幅度无明显差异(P>0.05,n4);自制刺激电极与进口刺激电极诱发的NMDA电流幅度分别为(267.2±36.5)pAvs(239.2

±41.0)pA,二者电流幅度无明显差异(P>0.05,n4),证明自制刺激电极成功。结论:大鼠脑片实验中,通过直接灌流激动剂与

MDA电流,自制刺激电极为在脑片上记录诱发电流提供了一种经济、可靠的实验手段,便于各实验室电刺激两种方式均可诱导N

应用。

【关键词】 脑片膜片钳;NMDA电流;灌流给药;电刺激;大鼠

【KEYWORDS】 brainslicepatchclamp; NMDAcurrent; perfusionadministration; electricalstimulation; rat

【中图分类号】R338.8    【文献标识码】A       【文章编号】10006834(2021)05459004

【DOI】10.12047/j.cjap.6053.2021.057

  膜片钳技术在1976年由德国科学家Nether和Sakmann

 

【基金项目】国家自然科学基金项目(81371254);山西省

‘1331工程’重点学科建设计划经费(XK201708);山西省自然

科学基金(201801D121318)

【收稿日期】20200323【修回日期】20210207

 

【通讯作者】Tel:(0351)4135560或3985163;Email:zhyucnm

@163.com

发明,他们首次在青蛙肌细胞上用双电极钳制膜电位的同时

1]

。这种技术通过记录到乙酰胆碱激活的单通道离子电流

记录细胞膜上单个或几个离子通道开放或关闭引起的电流

变化来研究细胞生理功能,已被广泛应用于生命科学领域,

尤其是神经科学的许多方面。如记录在脑内功能活动时神

460

经元兴奋性的变化,神经信号的产生和传导,神经环路中突

26]

。全细胞记录模式下可以获得细触的传递过程等研究中

ChinJApplPhysiol,2021,37(5)

孵育液配方(mmol/L):KCl2.5,CaCl,NaHPO

24

1.25,NaCl124,NaHCO6,Glucose10,渗透压为300~305

mmHg,pH7.3~7.4。

电极内液配方(mmol/L):KGluconate120,KCl5,

HEPESK10,EGTA5,CaCl.5,MgSO,Naphosphocrea

,NaATP5,NaGTP4,MgATP4,渗透压为290~300tine5

23

,pH7.35~7.45。mmHg

1.5 组织切片制备

切片液,孵育液均需提前通入混合气(95%O%

CO)至饱和。取切片液200ml左右,置于孵育盒中预先冰

冻至冰水混合状(内含小冰晶),另取一个孵育盒倒入适量孵

育液室温放置并持续通气。用1%戊巴比妥钠腹腔麻醉后断

头,快速取脑组织放到提前准备好的冰冻切片液中。培养皿

中放滤纸,滴加切片液,脑组织放在滤纸上,吸干水分的同时

用刀片修整脑组织,切取实验需要部位,周围用溶好的琼脂

包埋,切片厚度为200~300

本文标签: 脑片电极电流刺激细胞